ВЛИЯНИЕ ВИДА АНЕСТЕЗИИ НА ПОКАЗАТЕЛИ КРОВООБРАЩЕНИЯ У КРЫС

Цель – выявить особенности действия неингаляционных анестетиков двух видов на параметры центральной гемодинамики и микроциркуляции при окклюзионной пробе у групп крыс-самцов линии Wistar массой 400–500 г: 6 %-го раствора хлоралгидрата в дозе 300 мг/кг внутрибрюшинно (группа «ХГ») и комбини- рованной анестезии тилетамин/золазепам («Золетил 100», Франция) 20 мг/кг и ксилазин («Ксиланит», Россия) 5 мг/кг внутрибрюшинно (группа «зол + ксил»). Проведено инвазивное измерение артериального давления, расчет усредненной частоты сердечных сокращений, длительности интервалов PQ, QRS и QTc по данным электрокардиографии, измерение кожного кровотока методом лазерной допплеровской флоуметрии, исследование газового состава и кислотно-основного состояния артериальной крови. Средняя величина перфузии регистрировалась одновременно с записью электрокардиограммы и артериального давления. Для проведения окклюзионной пробы анализировали показатели постокклюзионной реактивной гиперемии. При анализе показателей центральной гемодинамики отмечено статистически значимое снижение артериального давления в группе «ХГ» по сравнению с группой «зол + ксил». Максимальная вазодилатация при реактивной гиперемии (CVCmax)
и время ее достижения (Tmax) были выше в группе «ХГ». Сравнение параметров газового состава и кислотно-основного состояния артериальной крови в исследуемых группах при обеих видах анестезии выявило компенсированный или субкомпенсированный смешанный ацидоз и умеренную артериальную гипоксемию.

1. Fish R. E., Brown M. J., Danneman P. J., Karas A. Z., editors. Anesthesia and analgesia in laboratory animals. 2nd ed. San Diego, CA: Academic Press; 2008. 656 p.

2. Flecknell P. Laboratory animal anaesthesia. 4th ed. Waltham, MA: Academic Press; 2016. 300 p.

3. Meyer R. E., Fish R. E. Pharmacology of injectable anesthetics, sedatives, and tranquilizers. In: Fish R. E., Brown M. J., Danneman P. J., Karas A. Z., editors. Anesthesia and analgesia in laboratory animals. 2nd ed. San Diego, CA: Academic Press; 2008. p. 27–82.

4. Struck M. B., Andrutis K. A., Ramirez H. E. et al. Effect of a short-term fast on ketamine-xylazine anesthesia in rats. J Am Assoc Lab Anim Sci. 2011;50(3):344–348.

5. Мороз В. В., Рыжков И. А. Острая кровопотеря: региональный кровоток и микроциркуляция: обзор. Ч. I // Общая реаниматология. 2016. Т. 12, № 2. С. 66–89.

6. Roustit M., Cracowski J. L. Non-invasive assessment of skin microvascular function in humans: An insight into methods. Microcirculation. 2012;19(1):47–64.

7. Сагайдачный А. А. Окклюзионная проба: методы анализа, механизмы реакции, перспективы применения // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2018. Т. 17, № 3. С. 5–22. DOI 10.24884/1682-6655-2018-17-3-5-22.

8. Крупаткин А. И., Сидоров В. В. Функциональная диагностика состояния микроциркуляторно-тканевых систем: колебания, информация, нелинейность. М. : ЛИБРОКОМ, 2013. 496 с.

9. Лапин К. Н., Рыжков И. А., Мальцева В. А. и др. Катетеризация сосудов мелких лабораторных животных при проведении биомедицинских исследований: технологические аспекты метода: обзор // Бюллетень сибирской медицины. 2021. Т. 20, № 3. С. 168–181. DOI 10.20538/1682-0363-2021-3-168-181.

10. Tew G. A., Klonizakis M., Crank H. et al. Comparison of laser speckle contrast imaging with laser Doppler for assessing microvascular function. Microvasc Res. 2011;82(3):326–332. DOI 10.1016/j.mvr.2011.07.007.

11. Руководство по лабораторным животным и альтернативным моделям в биомедицинских исследованиях / под ред. Н. Н. Каркищенко, С. В. Грачева. М. : Профиль-2С, 2010. 358 с.

12. Irwin M. R., Curay C. M., Choi S. et al. Basic physiological effects of ketamine-xylazine mixture as a general anesthetic preparation for rodent surgeries. Brain Res. 2023;1804:148251. DOI 10.1016/j.brainres. 2023.148251.

13. Field K. J., White W. J., Lang C. M. Anaesthetic effects of chloral hydrate, pentobarbitone and urethane in adult male rats. Lab Anim. 1993;27(3):258–269. DOI 10.1258/002367793780745471.

14. Васютина М. Л., Смирнова С. В. Сравнительный анализ препаратов, используемых для анестезии у крыс // Вестник Новгородского государственного университета. 2015. Т. 86, № 1. С. 41–43.

15. Савенко И. А., Усманский Ю. В., Ивашев М. Н. и др. Возможность применения ветеринарного препарата в экспериментальной фармакологии // Фундаментальные исследования. 2012. Т. 5, № 2. С. 422–425.

16. Jiron J. M., Mendieta Calle J. L., Castillo E. J. et al. Comparison of isoflurane, ketamine-dexmedetomidine, and ketamine-xylazine for general anesthesia during oral procedures in rice rats (oryzomys palustris). J Am Assoc Lab Anim Sci. 2019;58(1):40–49. DOI 10.30802/ AALAS-JAALAS 18-000032.

17. Rodrigues S. F., de Oliveira M. A., Martins J. O. et al. Differential effects of chloral hydrate- and ketamine/xylazine-induced anesthesia by the s.c. route. Life Sci. 2006;79(17):1630–1637. DOI 10.1016/j.lfs.2006.05.019.

18. Yuan X., Wu Q., Shang F. et al. A comparison of the cutaneous microvascular properties of the Spontaneously Hypertensive and the Wistar Kyoto rats by Spectral analysis of Laser Doppler. Clin Exp Hypertens. 2019;41(4):342–352. DOI 10.1080/10641963.2018.1481424.

19. Rajan V., Varghese B., van Leeuwen T. G. et al. Review of methodological developments in laser Doppler flowmetry. Lasers Med Sci. 2009;24(2):269–283. DOI 10.1007/s10103-007-0524-0.