MOTHER-PARASITE-FETUS SYSTEM SECRETOME OF FLUKES

The article analyses the problem of opisthorchiasis invasion influence by helminths secretome on the mother-fetus system. The analysis is made using published papers in the electronic libraries eLIBRARY.RU, CyberLeninka, and PubMed database. The article touches upon the processes of embryonic morphogenesis and the generative potential of offspring born from mothers with opisthorchiasis invasion as well. Studies have shown that opisthorchiasis in pregnant women alters the relationships within the mother-fetus system.
It increases the risks of preeclampsia, miscarriage and the development of complications in childbirth by the excretory-secretory products of parasites. Changes in the endocrine profile, liver dysfunctions, and the presence of parasite secretome in the mother’s blood can be considered as influence factors on the fetus. We propose the concept of a mother-fetus-parasite functional system, which is affected by opisthorchiasis invasion during pregnancy and requires urgent evaluation

1. Гаврилова Е. П., Кирпичникова Г. И., Кузнецов Н. И. и др. Гельминтозы: общая характеристика, диагностика, лечение // Российский семейный врач. 2016. Т. 20, № 4. С. 26–34.

2. ВОЗ. Информационный бюллетень «Улучшение охраны материнского здоровья». Сентябрь, 2017 // Социальные аспекты здоровья населения. 2017 № 5. С. 12.

3. Перевозчикова Н. Г., Костюкевич С. В. Возрастные особенности реактивных изменений печени при экспериментальном ларвальном цестодозе. URL: http://www.mif-ua.com/archive/article/44126 (дата обращения: 01.11.2024).

4. Wunderink H. F., Rozemeijer W., Wever P. C. et al. Foodborne trematodiasis and Opisthorchis felineus acquired in Italy // Emerging Infectious Diseases. 2014. Vol. 20, no. 1. P. 154–155.

5. Saijuntha W., Sithithaworn P., Kiatsopit N. et al. Liver flukes: Clonorchis and opisthorchis // Advances in Experimental Medicine and Biology. 2019. No. 1154. P. 139–180.

6. Saijuntha W., Sithithaworn P., Petney T. N. et al. Foodborne zoonotic parasites of the family Opisthorchiidae // Research in Veterinary Science. 2021.

7. Li X., Ding J., Zhang X. et al. MicroRNAs in opisthorchiids and their definitive hosts: Current status and perspectives // Molecular and Biochemical Parasitology. 2024. Vol. 260. P. 111636.

8. Маюрова А. С. Геоэкологическая оценка природного очага описторхоза на территории Ханты-Мансийского автономного округа – Югры : автореф. дис. … канд. геогр. наук. СПб., 2021. 159 с.

9. Августинович Д. Ф., Орловская И. А., Топоркова Л. Б. и др. Экспериментальный описторхоз: исследование состава форменных элементов крови, гемопоэза и стартл-рефлекса у лабораторных животных // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2016. Т. 20, № 2. С. 155–164.

10. Давыдова И. В. Гельминтозы, регистрируемые на территории Российской Федерации: эпидемиологическая ситуация, особенности биологии паразитов, патогенез, клиника, диагностика, этиотропная терапия // Consilium Medicum. 2017. Т. 19, № 8. С. 32–40.

11. Домацкий В. Н., Корникова А. Н. Распространение описторхоза в Тюменской области // АПК: Инновационные технологии. 2020. № 3. С. 6–10.

12. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2023 году : государственный доклад. М., 2024. URL: https://www.rospotrebnadzor.ru/ (дата обращения: 01.11.2024).

13. Бабкин А. М., Ходкевич Н. Е., Симакова А. В. Зараженность мышечными трематодами рыб семейства Cyprinidae в бассейне Средней Оби // Школа по теоретической и морской паразитологии : тез. докл. VII Всерос. конф. с междунар. участием, 9–14 сентября 2019 г. г. Севастополь. 2019. С. 89.

14. Запарина О. Г., Ковнер А. В., Мордвинов В. А., и др. Окислительные повреждения в печени при экспериментальном описторхозе накапливаются в зависимости от времени течения инфекции // Паразитологические исследования в Сибири и на Дальнем Востоке : материалы VI межрегион. науч. конф. паразитологов Сибири и Дальнего Востока, 4–6 сентября 2019 г. Новосибирск : Гарамонд, 2019. С. 56–58.

15. Описторхоз у взрослых : клинич. рекомендации: 2014 г. URL: https://inlnk.ru/Pmp9R1. (дата обращения: 01.11.2024).

16. Salam R. A., Haider B. A., Humayun Q. et al. Effect of administration of antihelminthics for soil-transmitted helminths during pregnancy // Cochrane Database of Systematic Reviews. 2015. Vol. 18, no. 6. P. CD005547.

17. Львова М. Н., Дужак Т. Г., Центалович Ю. П. и др. Секретом мариты печеночного сосальщика Opisthorchis felineus // Паразитология. 2014. Т. 48, № 3. С. 169–184.

18. Пахарукова М. Е., Ковнер А. В., Триголубов А. Н. и др. Механизмы патогенеза трематодозов: присутствие секреторных белков кошачьей двуустки Opisthorchis felineus в тканях желчного пузыря у больных хроническим описторхозом // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017. Т. 21, № 3. С. 312–316.

19. Салтыкова И. В., Петров В. А., Дорофеева Ю. Б., и др. Исследование распределения гемозоина при инвазии O. felineus и оценка его роли в модификации микробиоты желчных протоков // Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта. Сер.: Естественные и медицинские науки. 2017. № 4. С. 70–78.

20. Львова М. Н. Экспериментальное исследование патогенеза описторхоза, вызванного трематодой Opisthorchis felineus : автореф. дис. ... канд. биол. наук. Новосибирск., 2019. 150 с.

21. Chaiyadet S., Smout M., Johnson M. et al. Excretory/secretory products of the carcinogenic liver fluke are endocytosed by human cholangiocytes and drive cell proliferation and IL6 production // International Journal for Parasitology. 2015. Vol. 45, no. 12. P. 773–781.

22. Lopes D., Maiato H. The tubulin code in mitosis and cancer // Cells. 2020. Vol. 9, no. 11. P. 2356.

23. Maliekal T. T., Dharmapal D., Sengupta S. Tubulin isotypes: Emerging roles in defining cancer stem cell niche // Frontiers in Immunology. 2022. No. 13.

24. Cwiklinski K., de la Torre-Escudero E., Trelis M. et al. The extracellular vesicles of the helminth pathogen, Fasciola hepatica: Biogenesis pathways and cargo molecules involved in parasite pathogenesis // Molecular & Cellular Proteomics. 2015. Vol. 14, no. 12. P. 3258–3273.

25. Kafle A., Tenorio J. C. B., Mahato R. K. et al. Construction and validation of a novel multi-epitope in silico vaccine design against the paramyosin protein of Opisthorchis viverrini using immunoinformatics analyses // Acta Tropica. 2024. Vol. 7, no. 260. P. 107389.

26. Ishii N., Homma T., Lee J. et al. Ascorbic acid and CoQ10 ameliorate the reproductive ability of superoxide dismutase 1-deficient female mice // Biology of Reproduction. 2020. Vol. 102, no. 1. P. 102–115.

27. Ghneim H. K., Al-Sheikh Y. A., Alshebly M. M. et al. Superoxide dismutase activity and gene expression levels in Saudi women with recurrent miscarriage // Molecular Medicine Reports. 2016. Vol. 13, no. 3. P. 2606–2612.

28. Di Maggio L. S., Tirloni L., Pinto A. F. et al. Across intra-mammalian stages of the liver f luke Fasciola hepatica: a proteomic study // Scientific Reports. 2016. No. 6. P. 32796.

29. Matchimakul P., Rinaldi G., Suttiprapa S. et al. Apoptosis of cholangiocytes modulated by thioredoxin of carcinogenic liver fluke // The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 2015. No. 65. P. 72–80.

30. Delcroix M., Medzihradsky K., Caffrey C. R. et al. Proteomic analysis of adult S. mansoni gut contents // Molecular and Biochemical Parasitology. 2007. Vol. 154, no. 1. P. 95–97.

31. Liu F., Cui S. J., Hu W. et al. Excretory/secretory proteome of the adult developmental stage of human blood fluke, Schistosoma japonicum // Molecular & Cellular Proteomics. 2009. Vol. 8, no. 6. P. 1236–1251.

32. Mulvenna J., Sripa B., Brindley P. J. et al. The secreted and surface proteomes of the adult stage of the carcinogenic human liver fluke Opisthorchis viverrini // Proteomics. 2010. Vol. 10, no. 5. P. 1063–1078.

33. Suttiprapa S., Matchimakul P., Loukas A. et al. Molecular expression and enzymatic characterization of thioredoxin from the carcinogenic human liver fluke Opisthorchis viverrine // Parasitology International. 2012. Vol. 61, no. 1. P. 101–106.

34. Zheng M., Hu K., Liu W. et al. Proteomic analysis of excretory secretory products from Clonorchis sinensis adult worms: molecular characterization and serological reactivity of a excretory-secretory antigen-fructose-1,6-bisphosphatase // Parasitology Research. 2011. Vol. 109, no. 3. P. 737–744.

35. Mao Q., Xie Z., Wang X. et al. Clonorchis sinensis ferritin heavy chain triggers free radicals and mediates inflammation signaling in human hepatic stellate cells // Parasitology Research. 2015. Vol. 114, no. 2. P. 659–670.

36. Pomaznoy M. Y., Logacheva M. D., Young N. D. et al. Whole transcriptome profiling of adult and infective stages of the trematode Opisthorchis felineus // Parasitology International. 2016. Vol. 65, no. 1. P. 12–19.

37. Кужель Д. К., Зорина В. В., Бекиш В. Я. Изменения показателей щелочного гель электрофореза соматических клеток хозяина при экспериментальном описторхозе // Российский паразитологический журнал. 2014. № 3. С. 52−58.

38. Кужель Д. К., Бекиш В. Я., Семенов В. М. и др. Разработка комбинированного метода лечения описторхоза человека // Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2014. Т. 13, № 1. С. 70–76.

39. Sripa B., Tangkawattana S., Brindley P. J. Update on pathogenesis of opisthorchiasis and cholangiocarcinoma // Advances in Parasitology. 2018. Vol. 102. P. 97–113.

40. Сидельникова А. А., Начева Л. В. Цитологические особенности крови кроликов при экспериментальном описторхозе // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=24028 (дата обращения: 01.11.2024).

41. Барбараш Н. А., Барбараш О. Л., Калентьева С. В. Организм женщины при беременности: экстрагенитальные изменения: обзор литературы // Бюллетень Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2005. Т. 25, № 2. С. 107–111.

42. Бекирова Н. С., Исмакова Д. Е., Мадаминова Х. Ф. и др. Дисгормональные нарушения репродуктивного аппарата женщин при суперинвазионном описторхозе // Неделя молодежной науки – 2022 : сб. тр. конф. Всерос. науч. форума с международ. участием, 24–26 марта 2022 г. Тюмень, 2022. С. 339–340.

43. Бычков В. Г., Хадиева Е. Д., Морозов Е. Н. и др. Сигнальные молекулы. роль в организации эмерджентных состояний системы «паразит – хозяин» при суперинвазионном описторхозе // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2023. № 2. С. 23–31.

44. Aльбеков Н. Н. Эмерджентность как объект современной науки // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2-1. С. 421.