СИСТЕМА «МАТЬ – ПАРАЗИТ – ПЛОД». СЕКРЕТОМ ТРЕМАТОД
https://doi.org/10.35266/2949-3447-2024-3-8
Аннотация
Проведен анализ публикаций в электронных библиотеках eLIBRARY.RU, КиберЛенинка, базе данных PubMed о проблемах влияния описторхозной инвазии секретома гельминтов на систему «мать – плод», процессах эмбриональных морфогенезов и генеративного потенциала потомства, рожденного от матерей с описторхозной инвазией. Показано, что описторхозная инвазия у беременных изменяет взаимоотношения в системе «мать – плод», воздействуя экскреторно-секреторными продуктами паразита, повышает риски преэклампсии, невынашивания и развитие осложнений в родах. Изменения в гормональном фоне, нарушения функции печени, наличие компонентов секретома паразитов в крови матери может рассматриваться как фактор влияния на плод. Предлагается концепция формирования функциональной системы «мать – плод – паразит» на фоне описторхозной инвазии в условиях беременности и ее оценка с позиций эмерджетизма.
Ключевые слова
Об авторах
Я. А. КарповаРоссия
кандидат ветеринарных наук, доцент, член Всероссийского научного общества анатомов, гистологов и эмбриологов
В. Л. Янин
Россия
доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой гистологии, биологии и патологической анатомии, член Всероссийского научного общества анатомов, гистологов и эмбриологов
Е. Д. Хадиева
Россия
кандидат медицинских наук, член Всероссийского научного общества анатомов,
гистологов и эмбриологов
Ю. Г. Заикина
Россия
старший преподаватель, член Всероссийского научного общества анатомов, гистологов и эмбриологов
Ж. Т. Ибраев
Россия
аспирант
Ю. В. Алексеева
Россия
кандидат биологических наук, преподаватель, член Всероссийского научного общества анатомов, гистологов и эмбриологов
Список литературы
1. Гаврилова Е. П., Кирпичникова Г. И., Кузнецов Н. И. и др. Гельминтозы: общая характеристика, диагностика, лечение // Российский семейный врач. 2016. Т. 20, № 4. С. 26–34.
2. ВОЗ. Информационный бюллетень «Улучшение охраны материнского здоровья». Сентябрь, 2017 // Социальные аспекты здоровья населения. 2017 № 5. С. 12.
3. Перевозчикова Н. Г., Костюкевич С. В. Возрастные особенности реактивных изменений печени при экспериментальном ларвальном цестодозе. URL: http://www.mif-ua.com/archive/article/44126 (дата обращения: 01.11.2024).
4. Wunderink H. F., Rozemeijer W., Wever P. C. et al. Foodborne trematodiasis and Opisthorchis felineus acquired in Italy // Emerging Infectious Diseases. 2014. Vol. 20, no. 1. P. 154–155.
5. Saijuntha W., Sithithaworn P., Kiatsopit N. et al. Liver flukes: Clonorchis and opisthorchis // Advances in Experimental Medicine and Biology. 2019. No. 1154. P. 139–180.
6. Saijuntha W., Sithithaworn P., Petney T. N. et al. Foodborne zoonotic parasites of the family Opisthorchiidae // Research in Veterinary Science. 2021.
7. Li X., Ding J., Zhang X. et al. MicroRNAs in opisthorchiids and their definitive hosts: Current status and perspectives // Molecular and Biochemical Parasitology. 2024. Vol. 260. P. 111636.
8. Маюрова А. С. Геоэкологическая оценка природного очага описторхоза на территории Ханты-Мансийского автономного округа – Югры : автореф. дис. … канд. геогр. наук. СПб., 2021. 159 с.
9. Августинович Д. Ф., Орловская И. А., Топоркова Л. Б. и др. Экспериментальный описторхоз: исследование состава форменных элементов крови, гемопоэза и стартл-рефлекса у лабораторных животных // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2016. Т. 20, № 2. С. 155–164.
10. Давыдова И. В. Гельминтозы, регистрируемые на территории Российской Федерации: эпидемиологическая ситуация, особенности биологии паразитов, патогенез, клиника, диагностика, этиотропная терапия // Consilium Medicum. 2017. Т. 19, № 8. С. 32–40.
11. Домацкий В. Н., Корникова А. Н. Распространение описторхоза в Тюменской области // АПК: Инновационные технологии. 2020. № 3. С. 6–10.
12. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2023 году : государственный доклад. М., 2024. URL: https://www.rospotrebnadzor.ru/ (дата обращения: 01.11.2024).
13. Бабкин А. М., Ходкевич Н. Е., Симакова А. В. Зараженность мышечными трематодами рыб семейства Cyprinidae в бассейне Средней Оби // Школа по теоретической и морской паразитологии : тез. докл. VII Всерос. конф. с междунар. участием, 9–14 сентября 2019 г. г. Севастополь. 2019. С. 89.
14. Запарина О. Г., Ковнер А. В., Мордвинов В. А., и др. Окислительные повреждения в печени при экспериментальном описторхозе накапливаются в зависимости от времени течения инфекции // Паразитологические исследования в Сибири и на Дальнем Востоке : материалы VI межрегион. науч. конф. паразитологов Сибири и Дальнего Востока, 4–6 сентября 2019 г. Новосибирск : Гарамонд, 2019. С. 56–58.
15. Описторхоз у взрослых : клинич. рекомендации: 2014 г. URL: https://inlnk.ru/Pmp9R1. (дата обращения: 01.11.2024).
16. Salam R. A., Haider B. A., Humayun Q. et al. Effect of administration of antihelminthics for soil-transmitted helminths during pregnancy // Cochrane Database of Systematic Reviews. 2015. Vol. 18, no. 6. P. CD005547.
17. Львова М. Н., Дужак Т. Г., Центалович Ю. П. и др. Секретом мариты печеночного сосальщика Opisthorchis felineus // Паразитология. 2014. Т. 48, № 3. С. 169–184.
18. Пахарукова М. Е., Ковнер А. В., Триголубов А. Н. и др. Механизмы патогенеза трематодозов: присутствие секреторных белков кошачьей двуустки Opisthorchis felineus в тканях желчного пузыря у больных хроническим описторхозом // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017. Т. 21, № 3. С. 312–316.
19. Салтыкова И. В., Петров В. А., Дорофеева Ю. Б., и др. Исследование распределения гемозоина при инвазии O. felineus и оценка его роли в модификации микробиоты желчных протоков // Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта. Сер.: Естественные и медицинские науки. 2017. № 4. С. 70–78.
20. Львова М. Н. Экспериментальное исследование патогенеза описторхоза, вызванного трематодой Opisthorchis felineus : автореф. дис. ... канд. биол. наук. Новосибирск., 2019. 150 с.
21. Chaiyadet S., Smout M., Johnson M. et al. Excretory/secretory products of the carcinogenic liver fluke are endocytosed by human cholangiocytes and drive cell proliferation and IL6 production // International Journal for Parasitology. 2015. Vol. 45, no. 12. P. 773–781.
22. Lopes D., Maiato H. The tubulin code in mitosis and cancer // Cells. 2020. Vol. 9, no. 11. P. 2356.
23. Maliekal T. T., Dharmapal D., Sengupta S. Tubulin isotypes: Emerging roles in defining cancer stem cell niche // Frontiers in Immunology. 2022. No. 13.
24. Cwiklinski K., de la Torre-Escudero E., Trelis M. et al. The extracellular vesicles of the helminth pathogen, Fasciola hepatica: Biogenesis pathways and cargo molecules involved in parasite pathogenesis // Molecular & Cellular Proteomics. 2015. Vol. 14, no. 12. P. 3258–3273.
25. Kafle A., Tenorio J. C. B., Mahato R. K. et al. Construction and validation of a novel multi-epitope in silico vaccine design against the paramyosin protein of Opisthorchis viverrini using immunoinformatics analyses // Acta Tropica. 2024. Vol. 7, no. 260. P. 107389.
26. Ishii N., Homma T., Lee J. et al. Ascorbic acid and CoQ10 ameliorate the reproductive ability of superoxide dismutase 1-deficient female mice // Biology of Reproduction. 2020. Vol. 102, no. 1. P. 102–115.
27. Ghneim H. K., Al-Sheikh Y. A., Alshebly M. M. et al. Superoxide dismutase activity and gene expression levels in Saudi women with recurrent miscarriage // Molecular Medicine Reports. 2016. Vol. 13, no. 3. P. 2606–2612.
28. Di Maggio L. S., Tirloni L., Pinto A. F. et al. Across intra-mammalian stages of the liver f luke Fasciola hepatica: a proteomic study // Scientific Reports. 2016. No. 6. P. 32796.
29. Matchimakul P., Rinaldi G., Suttiprapa S. et al. Apoptosis of cholangiocytes modulated by thioredoxin of carcinogenic liver fluke // The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 2015. No. 65. P. 72–80.
30. Delcroix M., Medzihradsky K., Caffrey C. R. et al. Proteomic analysis of adult S. mansoni gut contents // Molecular and Biochemical Parasitology. 2007. Vol. 154, no. 1. P. 95–97.
31. Liu F., Cui S. J., Hu W. et al. Excretory/secretory proteome of the adult developmental stage of human blood fluke, Schistosoma japonicum // Molecular & Cellular Proteomics. 2009. Vol. 8, no. 6. P. 1236–1251.
32. Mulvenna J., Sripa B., Brindley P. J. et al. The secreted and surface proteomes of the adult stage of the carcinogenic human liver fluke Opisthorchis viverrini // Proteomics. 2010. Vol. 10, no. 5. P. 1063–1078.
33. Suttiprapa S., Matchimakul P., Loukas A. et al. Molecular expression and enzymatic characterization of thioredoxin from the carcinogenic human liver fluke Opisthorchis viverrine // Parasitology International. 2012. Vol. 61, no. 1. P. 101–106.
34. Zheng M., Hu K., Liu W. et al. Proteomic analysis of excretory secretory products from Clonorchis sinensis adult worms: molecular characterization and serological reactivity of a excretory-secretory antigen-fructose-1,6-bisphosphatase // Parasitology Research. 2011. Vol. 109, no. 3. P. 737–744.
35. Mao Q., Xie Z., Wang X. et al. Clonorchis sinensis ferritin heavy chain triggers free radicals and mediates inflammation signaling in human hepatic stellate cells // Parasitology Research. 2015. Vol. 114, no. 2. P. 659–670.
36. Pomaznoy M. Y., Logacheva M. D., Young N. D. et al. Whole transcriptome profiling of adult and infective stages of the trematode Opisthorchis felineus // Parasitology International. 2016. Vol. 65, no. 1. P. 12–19.
37. Кужель Д. К., Зорина В. В., Бекиш В. Я. Изменения показателей щелочного гель электрофореза соматических клеток хозяина при экспериментальном описторхозе // Российский паразитологический журнал. 2014. № 3. С. 52−58.
38. Кужель Д. К., Бекиш В. Я., Семенов В. М. и др. Разработка комбинированного метода лечения описторхоза человека // Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2014. Т. 13, № 1. С. 70–76.
39. Sripa B., Tangkawattana S., Brindley P. J. Update on pathogenesis of opisthorchiasis and cholangiocarcinoma // Advances in Parasitology. 2018. Vol. 102. P. 97–113.
40. Сидельникова А. А., Начева Л. В. Цитологические особенности крови кроликов при экспериментальном описторхозе // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=24028 (дата обращения: 01.11.2024).
41. Барбараш Н. А., Барбараш О. Л., Калентьева С. В. Организм женщины при беременности: экстрагенитальные изменения: обзор литературы // Бюллетень Сибирского отделения Российской академии медицинских наук. 2005. Т. 25, № 2. С. 107–111.
42. Бекирова Н. С., Исмакова Д. Е., Мадаминова Х. Ф. и др. Дисгормональные нарушения репродуктивного аппарата женщин при суперинвазионном описторхозе // Неделя молодежной науки – 2022 : сб. тр. конф. Всерос. науч. форума с международ. участием, 24–26 марта 2022 г. Тюмень, 2022. С. 339–340.
43. Бычков В. Г., Хадиева Е. Д., Морозов Е. Н. и др. Сигнальные молекулы. роль в организации эмерджентных состояний системы «паразит – хозяин» при суперинвазионном описторхозе // Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2023. № 2. С. 23–31.
44. Aльбеков Н. Н. Эмерджентность как объект современной науки // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2-1. С. 421.
Рецензия
Для цитирования:
Карпова Я.А., Янин В.Л., Хадиева Е.Д., Заикина Ю.Г., Ибраев Ж.Т., Алексеева Ю.В. СИСТЕМА «МАТЬ – ПАРАЗИТ – ПЛОД». СЕКРЕТОМ ТРЕМАТОД. Вестник СурГУ. Медицина. 2024;17(3):49-55. https://doi.org/10.35266/2949-3447-2024-3-8
For citation:
Karpova Ya.A., Yanin V.L., Khadieva E.D., Zaikina Yu.G., Ibraev Zh.T., Alekseeva Yu.V. MOTHER-PARASITE-FETUS SYSTEM SECRETOME OF FLUKES. Vestnik SurGU. Meditsina. 2024;17(3):49-55. (In Russ.) https://doi.org/10.35266/2949-3447-2024-3-8